Formation technicien de laboratoire d'analyses médicales

Leçon 1 • Chimie de base pour techniciens de laboratoire

Examine la structure atomique, les liaisons chimiques et la chimie des solutions. Prépare les étudiants à préparer des réactifs et à interpréter les réactions chimiques dans les tests.

Leçon 2 • Introduction aux principes biologiques

Aborde la structure cellulaire, les principales biomolécules et les concepts de base en microbiologie. Ancre les étudiants dans le contexte biologique des échantillons cliniques.

Leçon 3 • Protocoles de sécurité et contrôle des risques

Enseigne l'identification et l'atténuation des risques biologiques, chimiques et physiques. Soutient directement la conformité aux normes de sécurité au travail.

Leçon 4 • Mesures et unités scientifiques

Présente les unités métriques, les chiffres significatifs et la précision des mesures. Fournit les bases quantitatives nécessaires à toutes les procédures analytiques.

Leçon 1 • Principes et pratique de la centrifugation

Explique la force centrifuge, les types de rotors et les protocoles de séparation des échantillons. Une centrifugation correcte est essentielle pour produire des fractions d'échantillon analysables.

Leçon 2 • Essentiels de la verrerie et de la plastique

Identifie les récipients de laboratoire courants, leurs tolérances et les méthodes de nettoyage appropriées. Une sélection correcte des récipients prévient la contamination et les erreurs de mesure.

Leçon 3 • Spectrophotométrie et colorimétrie

Enseigne la loi de Beer-Lambert, la sélection des longueurs d'onde et la mesure de l'absorbance. Ces principes s'appliquent directement aux dosages biochimiques quantitatifs.

Leçon 4 • Techniques de microscopie

Aborde le fonctionnement de la microscopie à fond clair, à contraste de phase et à fluorescence. La microscopie est à la base des tâches de morphologie cellulaire et d'identification microbienne.

Leçon 1 • Prélèvement capillaire et d'échantillons alternatifs

Enseigne les méthodes de prélèvement par piqûre au doigt, au talon et pour les échantillons non sanguins. Élargit les compétences de prélèvement pour les contextes pédiatriques et de point de soin.

Leçon 2 • Reconnaissance des erreurs pré-analytiques

Identifie l'hémolyse, la lipémie, l'ictère et les échantillons coagulés comme critères de rejet. Une détection précoce des erreurs empêche la transmission de résultats non valides.

Leçon 3 • Étiquetage des échantillons et chaîne de traçabilité

Établit les normes d'étiquetage, les protocoles d'identification du patient et la documentation de la chaîne de traçabilité. Les erreurs à ce niveau invalident les résultats et créent des risques pour la sécurité des patients.

Leçon 4 • Transport et stabilité des échantillons

Aborde les exigences de température, les conteneurs de transport et les fenêtres de stabilité des analytes. Un transport approprié préserve l'intégrité des échantillons avant l'analyse.

Leçon 1 • Morphologie et identification des cellules sanguines

Enseigne la morphologie normale et anormale des érythrocytes, leucocytes et plaquettes. La reconnaissance de la morphologie est la base de l'interprétation de la formule leucocytaire manuelle.

Leçon 2 • Réalisation de la numération formule sanguine

Aborde les paramètres automatisés de la NFS, les intervalles de référence et les contrôles delta. Les étudiants font fonctionner les analyseurs et vérifient les résultats par rapport au contexte clinique.

Leçon 3 • Formule leucocytaire manuelle et numération des réticulocytes

Développe les compétences pour la formule leucocytaire manuelle sur 100 cellules et le décompte des réticulocytes. La révision manuelle confirme ou corrige les classifications de l'analyseur automatisé.

Leçon 4 • Voie de la coagulation et tests

Explique les voies intrinsèque, extrinsèque et commune de la coagulation ainsi que les tests associés. Les étudiants réalisent les tests TP, TCA et fibrinogène et interprètent les résultats.

Leçon 1 • Analyse d'urine : examen physique et chimique

Enseigne l'interprétation de la couleur, de la clarté, de la densité urinaire et de la bandelette réactive. Les résultats physiques et chimiques guident les priorités de l'examen microscopique.

Leçon 2 • Tests du bilan métabolique

Aborde le glucose, les électrolytes, les marqueurs de la fonction rénale et les enzymes hépatiques. Les étudiants réalisent des bilans sur des analyseurs automatisés et signalent les résultats anormaux.

Leçon 3 • Analyse des gaz du sang et des électrolytes

Aborde le prélèvement de gaz du sang artériel, le fonctionnement de l'analyseur et l'interprétation de l'équilibre acido-basique. Les étudiants identifient les perturbations respiratoires et métaboliques à partir des résultats.

Leçon 4 • Examen microscopique des urines et analyse du sédiment

Développe les compétences pour préparer et examiner le sédiment urinaire à la recherche de cellules, de cylindres et de cristaux. Les résultats microscopiques confirment ou complètent les résultats de la bandelette.

Leçon 1 • Tests fongiques et parasitaires

Présente la culture fongique, la préparation au KOH et l'examen pour les œufs et parasites. Élargit les compétences d'identification au-delà des bactéries à d'autres classes de pathogènes.

Leçon 2 • Traitement des échantillons pour la microbiologie

Aborde les techniques d'inoculation, la sélection des milieux et les conditions d'incubation. Un traitement correct maximise la récupération des micro-organismes et minimise la contamination.

Leçon 3 • Diagnostics moléculaires en microbiologie

Aborde les principes de la PCR, l'extraction des acides nucléiques et l'interprétation des résultats. Les méthodes moléculaires offrent une détection rapide et sensible des organismes difficiles à cultiver.

Leçon 4 • Antibiogramme

Aborde la diffusion sur disque, la microdilution en bouillon et l'interprétation de la CMI. Les résultats guident le choix des antibiotiques par le clinicien et la surveillance de la résistance.

Leçon 1 • Réactions transfusionnelles et prise en charge

Identifie les types de réactions transfusionnelles aiguës et retardées ainsi que les étapes du bilan biologique. Une réponse rapide du laboratoire minimise les risques pour le patient lors des complications transfusionnelles.

Leçon 2 • Tests de compatibilité et épreuve de compatibilité croisée

Aborde le dépistage des anticorps, leur identification et la compatibilité croisée électronique vs sérologique. Les étudiants réalisent les workflows de tests pré-transfusionnels pour les produits à base de globules rouges.

Leçon 3 • Systèmes de groupes sanguins ABO et Rh

Enseigne les principes du groupage ABO direct et indirect ainsi que du typage Rh. Un groupage sanguin précis est la pierre angulaire de la sécurité transfusionnelle.

Leçon 4 • Techniques de tests sérologiques

Aborde les méthodes d'agglutination, de précipitation, ELISA et d'immunofluorescence. Les étudiants sélectionnent et réalisent les tests appropriés pour la sérologie des maladies infectieuses.

Leçon 1 • Validation et vérification des méthodes

Enseigne la vérification de la justesse, de la fidélité, de la linéarité et de l'intervalle de référence. La validation confirme qu'une méthode fonctionne comme annoncé avant le début des tests sur les patients.

Leçon 2 • Principes statistiques du contrôle qualité

Aborde les cartes de Levey-Jennings, les règles de Westgard et la gestion des matériaux de contrôle. Le CQ statistique détecte les erreurs analytiques systématiques et aléatoires avant la sortie des résultats des patients.

Leçon 3 • Conformité réglementaire et accréditation

Aborde les normes d'accréditation, la préparation aux inspections et l'évaluation des compétences du personnel. La conformité protège la sécurité des patients et maintient l'autorisation d'exploitation du laboratoire.

Leçon 4 • Systèmes d'information du laboratoire

Présente l'architecture du SIL, la saisie des demandes, la vérification des résultats et la gestion des interfaces. La maîtrise du SIL garantit un flux de données précis de l'analyseur au dossier du patient.