Cours de médecine régénérative

Leçon 1 • Organisation et réparation tissulaires

Examine comment les tissus sont organisés en unités fonctionnelles et comment ils réagissent aux lésions. Établit la base biologique des interventions régénératives ciblées.

Leçon 2 • Présentation éthique et réglementaire

Passe en revue les débats éthiques et les cadres réglementaires régissant la recherche régénérative et sa traduction clinique. Prépare les étudiants à naviguer dans les exigences de conformité tout au long du cours.

Leçon 3 • Notions essentielles de biologie cellulaire

Passe en revue la structure cellulaire, les voies de signalisation et le cycle cellulaire comme prérequis à la compréhension de la régénération. Relie le comportement cellulaire aux résultats de réparation au niveau tissulaire.

Leçon 4 • Bases de la biologie des cellules souches

Présente les types de cellules souches, les niveaux de puissance et les mécanismes d'auto-renouvellement centraux pour les stratégies régénératives. Construit le vocabulaire nécessaire pour tous les chapitres suivants.

Leçon 1 • Dérivation des cellules souches embryonnaires

Couvre l'isolement au stade blastocyste, la culture sur couche nourricière et le maintien de la pluripotence des cellules souches embryonnaires. Relie les méthodes de dérivation au potentiel de différenciation en aval.

Leçon 2 • Populations de cellules souches adultes

Identifie les cellules souches résidant dans les tissus des niches médullaires, adipeuses et neurales ainsi que leurs méthodes de prélèvement. Relie les propriétés des cellules souches adultes aux applications de thérapie autologue.

Leçon 3 • Cellules souches pluripotentes induites

Explique l'administration des facteurs de reprogrammation, la sélection des colonies d'iPSC et les protocoles de contrôle de sécurité. Établit les iPSC comme une alternative spécifique au patient par rapport aux sources embryonnaires.

Leçon 4 • Contrôle qualité et banques de cellules

Aborde la cryoconservation, les tests de stérilité et les critères de libération pour les opérations de banques de cellules. Prépare les étudiants à maintenir l'intégrité des produits cellulaires lors du stockage et de la distribution.

Leçon 1 • Lignages mésodermiques et endodermiques

Détaille les protocoles de génération de progéniteurs cardiaques, musculaires squelettiques, hépatiques et pancréatiques à partir de cellules pluripotentes. Relie le choix du lignage à des objectifs spécifiques de modélisation de maladies et de réparation.

Leçon 2 • Voies de signalisation dans la différenciation

Cartographie les voies Wnt, Notch, BMP et FGF qui contrôlent les décisions d'engagement du lignage. Fournit la base mécaniste pour la conception de protocoles de différenciation.

Leçon 3 • Lignages ectodermiques et neuraux

Couvre l'induction neurale, le modelage des neurones corticaux et la spécification des cellules gliales à partir de sources pluripotentes. Développe les compétences pour la modélisation des maladies neurologiques et les stratégies de réparation neurale.

Leçon 4 • Surexpression de facteurs de transcription

Examine la reprogrammation directe à l'aide de facteurs de transcription maîtres pour convertir des cellules somatiques sans intermédiaire pluripotent. Met en évidence les gains d'efficacité et les considérations de sécurité par rapport aux voies iPSC.

Leçon 1 • Échafaudages en polymères naturels

Examine le collagène, la fibrine, l'acide hyaluronique et l'alginate comme biomatériaux naturels instructifs pour les cellules. Relie leur capacité de signalisation biologique à une amélioration de l'attachement et de la différenciation cellulaires.

Leçon 2 • Principes de conception des biomatériaux

Présente les exigences de biocompatibilité, de biodégradabilité et de propriétés mécaniques pour les échafaudages régénératifs. Cadre la sélection des matériaux en fonction de l'environnement du tissu cible.

Leçon 3 • Technologies de fabrication d'échafaudages

Passe en revue l'électrofilage, la lyophilisation et la bioimpression 3D comme plateformes de fabrication d'échafaudages. Prépare les étudiants à choisir des méthodes de fabrication en fonction des exigences structurelles et cliniques.

Leçon 4 • Échafaudages en polymères synthétiques

Couvre les matériaux à base de PLGA, PCL et PEG offrant une dégradation et des propriétés mécaniques ajustables. Met en évidence les compromis entre le contrôle synthétique et la capacité de signalisation biologique.

Leçon 1 • Intégration cellules-échafaudage

Aborde la densité d'ensemencement, les facteurs d'attachement et la distribution spatiale des cellules dans les échafaudages tridimensionnels. Établit comment les interactions matière-cellules déterminent l'homogénéité et la fonction de la construction.

Leçon 2 • Stratégies de vascularisation

Examine la prévascularisation, l'administration de facteurs angiogéniques et l'incorporation de canaux microfluidiques pour surmonter les limites de diffusion. Aborde le verrou critique pour la conception de constructions tissulaires épaisses et viables.

Leçon 3 • Systèmes de culture en bioréacteur

Compare les bioréacteurs à agitation, à paroi tournante et à perfusion pour l'apport de nutriments et la stimulation mécanique. Relie la conception du bioréacteur à une amélioration de la maturation et de la évolutivité de la construction.

Leçon 4 • Approches d'ingénierie spécifiques aux organes

Applique les principes d'ingénierie tissulaire à la peau, au cartilage, à l'os et au muscle cardiaque comme cibles représentatives. Démontre comment les exigences spécifiques à l'organe façonnent les choix d'échafaudage, de cellules et de culture.

Leçon 1 • Applications thérapeutiques d'édition génique

Applique les stratégies d'édition aux hémoglobinopathies, dystrophies musculaires et immunodéficiences comme études de cas cliniques. Démontre le flux de travail complet, de l'identification de la mutation au produit cellulaire corrigé.

Leçon 2 • Détection hors cible et sécurité

Passe en revue les méthodes GUIDE-seq, CIRCLE-seq et de séquençage du génome entier pour détecter les modifications non intentionnelles. Prépare les étudiants à générer les données de sécurité requises pour les soumissions réglementaires.

Leçon 3 • Conception du système CRISPR-Cas9

Couvre la sélection des variants de Cas9, l'optimisation de l'ARN guide et les choix de format d'administration pour l'édition de cellules souches. Relie les décisions de conception à l'efficacité d'édition et à la minimisation de l'activité hors cible.

Leçon 4 • Principes de l'édition génique

Introduit les voies de réparation des cassures double-brin et comment les outils d'édition les exploitent pour des modifications génomiques précises. Établit le fondement mécaniste pour toute conception de stratégie d'édition ultérieure.

Leçon 1 • Modèles animaux de grande taille et modèles translationnels

Aborde les modèles porcins, ovins et de primates non humains qui se rapprochent mieux de l'anatomie et des réponses immunitaires humaines. Prépare les étudiants à justifier la conception d'études sur grands animaux auprès des examinateurs réglementaires.

Leçon 2 • Techniques d'imagerie et de suivi

Couvre la bioluminescence, l'IRM, le TEP et l'imagerie par fluorescence pour le suivi de la prise de greffe cellulaire et de la réparation tissulaire in vivo. Permet une évaluation longitudinale non invasive des résultats régénératifs.

Leçon 3 • Principes de conception d'études précliniques

Couvre la randomisation, l'insu, le calcul de la taille de l'échantillon et la sélection des critères d'évaluation pour les études en médecine régénérative. Établit une conception rigoureuse comme fondement d'une preuve préclinique translationnelle.

Leçon 4 • Modèles de petits animaux

Examine les modèles rongeurs d'infarctus du myocarde, de lésion médullaire et de diabète pour les tests régénératifs. Relie la sélection du modèle à la question biologique et à la valeur translationnelle attendue.

Leçon 1 • Consentement éclairé et sécurité des patients

Examine les exigences des documents de consentement, la communication des risques et les obligations de suivi à long terme pour les participants aux essais. Assure que les étudiants respectent les normes éthiques tout au long du développement clinique.

Leçon 2 • Surveillance post-commercialisation et cycle de vie

Couvre la pharmacovigilance, le suivi par registre et la gestion du cycle de vie du produit après approbation réglementaire. Prépare les étudiants à maintenir la sécurité et la conformité du produit tout au long de son utilisation commerciale.

Leçon 3 • Fabrication et conformité aux BPE

Couvre les exigences de bonnes pratiques de fabrication pour la production de thérapie cellulaire, y compris la conception des installations et les enregistrements de lots. Relie la qualité de fabrication à la sécurité du produit et à l'acceptation réglementaire.

Leçon 4 • Classification réglementaire des produits cellulaires

Explique comment les agences réglementaires classent les produits à base de cellules en fonction du niveau de manipulation et de l'utilisation prévue. Permet aux étudiants de déterminer la voie réglementaire correcte dès le début du développement du produit.