Kurs für medizinische Labortechniker

Lektion 1 • Grundsätze der Laborsicherheit

Behandelt biologische, chemische und physikalische Gefahren in klinischen Laboren. Fördert Gewohnheiten, die Expositionsvorfälle und Verletzungen am Arbeitsplatz verhindern.

Lektion 2 • Regulatorische Rahmenbedingungen und Qualitätsmanagement

Führt in Akkreditierungsstandards, Ringversuche und Qualitätsmanagementkonzepte ein. Bereitet die Studierenden auf die Arbeit in konformen Laborsystemen vor.

Lektion 3 • Rolle des Medizinisch-technischen Laborfachpersonals

Definiert die Verantwortlichkeiten von MLT innerhalb des Versorgungsteams und der Laborhierarchie. Stellt die täglichen Aufgaben in den Kontext der Ergebnisse der Patientenversorgung.

Lektion 4 • Labormathematik und Einheiten

Vermittelt quantitative Fähigkeiten, die für die Reagenzienvorbereitung und Ergebnisinterpretation unerlässlich sind. Unterstützt direkt die Genauigkeit aller nachgelagerten Laborverfahren.

Lektion 1 • Kapillare und alternative Entnahmemethoden

Behandelt Fingerkuppen-, Fersen- und arterielle Entnahmen für spezielle Patientengruppen. Erweitert die Entnahmekompetenz über die routinemäßige Venenpunktion hinaus.

Lektion 2 • Probentransport und -lagerung

Definiert Temperatur-, Zeit- und Behälteranforderungen für die Probenstabilität. Stellt die Integrität der Analyten von der Entnahme bis zur Analyse sicher.

Lektion 3 • Phlebotomie-Techniken und Venenpunktion

Behandelt die Reihenfolge der Blutentnahmeröhrchen, die Auswahl der Punktionsstelle und die Patientenidentifikation. Stellt die Probenqualität und Patientensicherheit bei der Blutentnahme sicher.

Lektion 4 • Präanalytische Fehlerprävention

Identifiziert häufige präanalytische Variablen, die Testergebnisse beeinflussen. Fördert kritisches Denken, um Fehler vor der Analyse zu erkennen und zu korrigieren.

Lektion 1 • Analyse von serösen und synovialen Flüssigkeiten

Behandelt Untersuchungsmethoden für Pleura-, Peritoneal-, Perikard- und Synovialflüssigkeit. Erweitert die Kompetenz in Körperflüssigkeiten auf nicht-ZNS-Kompartimente.

Lektion 2 • Urinmikroskopie

Behandelt die Vorbereitung und systematische Untersuchung von Urinsediment auf Zellen, Zylinder und Kristalle. Ermöglicht die Erkennung von Nieren- und Harnwegspathologien.

Lektion 3 • Liquoranalyse

Behandelt Liquoraussehen, Zellzahl, Protein, Glukose und mikrobiologische Testung. Bereitet die Studierenden auf dringende Abklärungen von ZNS-Infektionen und Blutungen vor.

Lektion 4 • Urinprobenentnahme und -typen

Behandelt zufällige, Mittelstrahl-, Katheter- und zeitlich gesammelte Urinentnahmemethoden. Stellt die Integrität der Probe entsprechend der klinischen Fragestellung sicher.

Lektion 1 • Klassifizierung und Erkennung von Anämien

Wendet Blutbild- und Morphologiedaten an, um Anämien nach Mechanismus und Indizes zu klassifizieren. Fördert diagnostisches Denken für häufige hämatologische Erkrankungen.

Lektion 2 • Erstellung eines vollständigen Blutbildes

Behandelt die automatisierte Blutbildanalyse, Gerätebedienung und die Anwendung von Referenzintervallen. Verbindet die Geräteausgabe mit der klinischen Interpretation.

Lektion 3 • Blutzellbildung und -funktion

Wiederholt die Hämatopoese und die funktionellen Rollen von Erythrozyten, Leukozyten und Thrombozyten. Bietet die physiologische Grundlage für die Interpretation von Blutbildergebnissen.

Lektion 4 • Beurteilung des peripheren Blutausstrichs

Lehrt die Ausstrichvorbereitung, Färbung und systematische morphologische Überprüfung. Ermöglicht die Erkennung zellulärer Anomalien, die von der Automatisierung übersehen werden.

Lektion 1 • Testung von Stoffwechselprofilen

Behandelt Glukose-, Elektrolyt-, Nieren- und Leberfunktionsanalyten auf automatisierten Plattformen. Verbindet biochemische Stoffwechselwege mit der klinischen Bedeutung der Ergebnisse.

Lektion 2 • Qualitätskontrolle in der Chemie

Wendet Westgard-Regeln und Levey-Jennings-Diagramme zur Überwachung der analytischen Leistung an. Befähigt die Studierenden, Situationen außerhalb der Kontrolle zu erkennen und darauf zu reagieren.

Lektion 3 • Bedienung automatisierter Analysegeräte

Lehrt Inbetriebnahme, Kalibrierung und Wartung von Chemie-Analysegeräten. Stellt sicher, dass die Studierenden die Geräteleistung aufrechterhalten und Ausfallzeiten minimieren können.

Lektion 4 • Grundsätze der analytischen Chemie

Wiederholt Photometrie, Elektrochemie und Immunoassay-Prinzipien, die Chemie-Analysegeräten zugrunde liegen. Bietet die theoretische Grundlage für Methodenauswahl und Fehlerbehebung.

Lektion 1 • Antimikrobielle Empfindlichkeitstestung

Behandelt Agardiffusionstest, Bouillon-Mikrodilution und MHK-Interpretation anhand von Breakpoint-Standards. Bereitet die Studierenden darauf vor, die geeignete Antibiotikatherapie zu unterstützen.

Lektion 2 • Methoden zur Identifizierung von Bakterien

Lehrt Gram-Färbung, biochemische Testung und schnelle Identifizierungssysteme. Vermittelt systematische Identifizierungsfähigkeiten für häufige Krankheitserreger.

Lektion 3 • Kulturmedien und Inokulationstechniken

Behandelt selektive, differenzierende und Anreicherungsmedien sowie geeignete Inokulationsmethoden. Stellt eine optimale Anzucht von Organismen aus klinischen Proben sicher.

Lektion 4 • Grundlagen der Parasitologie und Mykologie

Führt in häufige Parasiten und Pilze ein, die in klinischen Proben vorkommen. Erweitert die Identifizierungsfähigkeiten über die Bakteriologie hinaus zur vollständigen mikrobiologischen Kompetenz.

Lektion 1 • Testung auf Autoimmunität und Immunschwäche

Behandelt ANA-, Rheumafaktor- und Komplement-Assays für Autoimmunerkrankungen. Erweitert die serologische Kompetenz auf nicht-infektiöse Immunerkrankungen.

Lektion 2 • Grundlagen des Immunsystems

Wiederholt die angeborene und adaptive Immunität, die Antikörperstruktur und Antigen-Antikörper-Reaktionen. Bietet die immunologische Grundlage für alle serologischen Testmethoden.

Lektion 3 • Serologie von Infektionskrankheiten

Wendet serologische Methoden zum Nachweis von Antikörpern gegen häufige Infektionskrankheiten an. Fördert Fähigkeiten zur Ergebnisinterpretation im klinischen Kontext.

Lektion 4 • Agglutinations- und Präzipitationsassays

Behandelt direkte und indirekte Agglutination, Latexagglutination und Präzipitationsmethoden. Verbindet Reaktionsprinzipien mit der routinemäßigen serologischen Testdurchführung.

Lektion 1 • AB0- und Rh-Blutgruppensysteme

Behandelt AB0-Vorwärts- und Rückwärtsbestimmung sowie Prinzipien der Rh-Typisierung. Legt die Grundlage für alle Verträglichkeitstestverfahren.

Lektion 2 • Blutkomponenten und Indikationen

Beschreibt Herstellung, Lagerung und klinische Indikationen für Erythrozytenkonzentrate, Thrombozyten, FFP und Kryopräzipitat. Verbindet die Komponentenauswahl mit den klinischen Bedürfnissen des Patienten.

Lektion 3 • Antikörpersuchtest und -identifizierung

Lehrt Antikörpersuchtest, Panel-Testung und Identifizierung klinisch bedeutsamer Alloantikörper. Stellt eine sichere Blutauswahl für alloimmunisierte Patienten sicher.

Lektion 4 • Verträglichkeitstestung und Kreuzprobe

Behandelt elektronische, Immediate-Spin- und Antiglobulin-Kreuzprobenverfahren. Bereitet die Studierenden auf die Auswahl kompatibler Blutprodukte für die Transfusion vor.