
Curs de Electroforeză
Stăpâniți fiecare tehnică majoră de electroforeză utilizată în biologia moleculară modernă, biochimie și diagnosticul clinic. Acest curs vă duce de la principiile fundamentale ale separării bazate pe sarcină până la metode avansate precum electroforeza capilară, 2-DE și EMSA. Dezvoltați expertiza practică cerută de laboratoarele de cercetare și unitățile de diagnostic.
Ce vei învăța:
Acest curs acoperă principiile fizice și chimice ale separării electroforetice, chimia gelurilor de agaroză și poliacrilamidă și sistemele de tampon. Veți învăța să efectuați electroforeză pe gel de agaroză pentru acizi nucleici, SDS-PAGE pentru proteine și western blot cu detectare imunologică cantitativă. De asemenea, acoperă PAGE nativ, focalizarea izoelectrică, electroforeza bidimensională pe gel și formatele de electroforeză capilară. Subiectele avansate includ electroforeza în câmp pulsatoriu, EMSA, validarea metodei și integrarea cu spectrometria de masă și fluxurile de lucru de secvențiere. Aplicațiile clinice precum electroforeza proteinelor serice și analiza variantelor de hemoglobină sunt incluse alături de siguranța de laborator și instrumente bioinformatice pentru analiza datelor obținute din geluri.
Cum studiezi practic Curs de Electroforeză
Cum exersezi Curs de Electroforeză
Pentru tine, care reprezinți o companie și vrei să îți instruiești echipa
La Dedika pentru companii, cursul vine cu exerciții și exemple adaptate afacerii tale și exact așa cum are nevoie compania ta.
Conținutul cursului
8 Capitole • 38 LecțiiDurata între 4 și 360 ore (tu decizi)
Capitolul 1AscundeAscunde detaliiVezi detaliiFundamentele electroforezei
Fundamentele electroforezei
Lecția 1 • Variabilele cheie care afectează separarea
Identifică tensiunea, temperatura, pH-ul și compoziția probei ca parametri critici. Studenții învață să prezică modul în care modificarea fiecărei variabile schimbă modelele de migrare.
Lecția 2 • Dezvoltarea istorică și aplicațiile
Urmează evoluția electroforezei de la studiile timpurii ale proteinelor serice până la genomica modernă. Contextualizează evoluția tehnicii și motivează capitolele tehnice ulterioare.
Lecția 3 • Principiile migrării moleculelor încărcate
Acoperă sarcina ionică, interacțiunile cu câmpul electric și conceptele de sarcină netă. Conectează electrochimia fundamentală la motivul pentru care moleculele se deplasează într-o matrice de gel sau soluție.
Lecția 4 • Rolul mediului de separare
Examinează modul în care matricele de gel și soluțiile tampon creează un mediu de sitare. Stabilește legătura dintre proprietățile mediului și calitatea rezoluției.
Capitolul 2AscundeAscunde detaliiVezi detaliiMatricele de gel și sistemele tampon
Matricele de gel și sistemele tampon
Lecția 1 • Sisteme de gel speciale și modificate
Introducere în gelurile cu gradient, gelurile denaturante și agaroza cu punct de topire scăzut. Extinde setul de instrumente al studentului pentru separări dificile întâlnite în capitolele ulterioare.
Lecția 2 • Sistemele tampon și funcțiile lor
Compară tampoanele TAE, TBE, MOPS, Tris-glicină și MES în funcție de intervalul de tamponare și forța ionică. Studenții asociază alegerea tamponului cu tipul de analit și aplicațiile ulterioare.
Lecția 3 • Chimia gelurilor de poliacrilamidă
Explică polimerizarea acrilamidei și bis-acrilamidei, densitatea de reticulare și notația %T/%C. Pregătește studenții să formuleze geluri pentru separarea proteinelor și acizilor nucleici mici.
Lecția 4 • Chimia și prepararea gelurilor de agaroză
Acoperă structura polimerului de agaroză, mecanismul de gelifiere și efectele concentrației asupra dimensiunii porilor. Permite în mod direct studenților să prepare geluri potrivite pentru separarea acizilor nucleici.
Capitolul 3AscundeAscunde detaliiVezi detaliiElectroforeza pe gel de agaroză a acizilor nucleici
Electroforeza pe gel de agaroză a acizilor nucleici
Lecția 1 • Marcatori de greutate moleculară și scări de masă
Explică compoziția scării de masă, dimensionarea fragmentelor și volumele corecte de încărcare. Estimarea corectă a dimensiunii depinde de selectarea corectă a markerului și de plasarea pe bandă.
Lecția 2 • Depanarea defectelor comune ale gelurilor
Identifică cauzele petelor neclare, benzilor deformate, benzilor slabe și fluorescenței de fond. Abilitățile sistematice de depanare se transferă la toate tehnicile pe gel din capitolele ulterioare.
Lecția 3 • Colorare, vizualizare și documentare
Compară metodele de colorare cu bromură de etidiu, SYBR Safe și GelRed și imagistica UV/lumină albastră. Studenții selectează protocoale de colorare sigure și sensibile și documentează corect rezultatele.
Lecția 4 • Prepararea probelor pentru acizi nucleici
Acoperă cuantificarea ADN-ului și ARN-ului, compoziția tamponului de încărcare și denaturarea pentru ARN. Prepararea corectă previne petele neclare și asigură o migrare reproductibilă.
Lecția 5 • Condițiile de desfășurare și protocolul de electroforeză
Detaliază setările de tensiune, timpul de desfășurare, recircularea tamponului și gestionarea temperaturii. Studenții execută o desfășurare completă a gelului cu rezultate consistente și reproductibile.
Capitolul 4AscundeAscunde detaliiVezi detaliiSDS-PAGE pentru separarea proteinelor
SDS-PAGE pentru separarea proteinelor
Lecția 1 • Formularea gelului pentru SDS-PAGE
Acoperă compoziția gelului de concentrare și separare, procentele de acrilamidă și opțiunile cu gradient. Studenții formulează geluri adaptate intervalului de greutate moleculară a proteinelor țintă.
Lecția 2 • Estimarea greutății moleculare și analiza benzilor
Utilizează scări de masă proteice și regresie liniară pe grafice semi-log pentru a estima greutățile moleculare. Studenții interpretează modelele de benzi pentru a evalua puritatea, degradarea și nivelurile de expresie.
Lecția 3 • Desfășurarea SDS-PAGE și colorarea proteinelor
Ghidează studenții prin asamblare, condițiile de electroforeză și colorarea Coomassie sau cu argint. Executarea corectă produce benzi clare și bine rezolvate, potrivite pentru analize ulterioare.
Lecția 4 • Prepararea probelor proteice
Detaliază metodele de liză, testele de cuantificare a proteinelor și prepararea tamponului de probă. Prepararea consistentă a probei este o condiție prealabilă pentru rezultate reproductibile SDS-PAGE.
Lecția 5 • Denaturarea cu SDS și normalizarea sarcinii
Explică modul în care SDS se leagă de proteine, desface structura terțiară și conferă o sarcină negativă uniformă. Acest mecanism este miezul conceptual al separării proteinelor pe bază de dimensiune.
Capitolul 5AscundeAscunde detaliiVezi detaliiWestern Blotting și imunodetecția
Western Blotting și imunodetecția
Lecția 1 • Sisteme de detecție și generare de semnal
Compară metodele de detecție prin chemiluminiscență ECL, fluorescentă și colorimetrică. Studenții selectează sisteme de detecție în funcție de cerințele de sensibilitate și instrumentația disponibilă.
Lecția 2 • Blocarea și incubarea cu anticorpi
Acoperă agenți de blocare, optimizarea diluției anticorpului primar și selectarea anticorpului secundar. Condițiile corecte de blocare și de anticorpi minimizează fondul și maximizează specificitatea semnalului.
Lecția 3 • Transferul proteinelor pe membrane
Compară sistemele de transfer umed, semi-uscat și uscat și membranele PVDF vs. nitroceluloză. Eficiența transferului determină direct sensibilitatea detecției în etapele ulterioare.
Lecția 4 • Analiza cantitativă Western Blot
Introduce controale de încărcare, strategii de normalizare și software de densitometrie. Studenții produc date cantitative valide statistic din imagini western blot.
Lecția 5 • Îndepărtarea și reîncubarea membranelor
Explică protocoalele de îndepărtare chimică și ușoară și efectul lor asupra integrității membranei. Reîncubarea maximizează datele dintr-un singur blot și reduce consumul de probă.
Capitolul 6AscundeAscunde detaliiVezi detaliiPAGE nativ și focalizare izoelectrică
PAGE nativ și focalizare izoelectrică
Lecția 1 • Rehidratarea benzilor IPG și protocolul IEF
Detaliază metodele de încărcare a probei, condițiile de rehidratare și programele de creștere a tensiunii IEF. Executarea corectă a protocolului previne dungile orizontale și asigură o focalizare clară.
Lecția 2 • Principiile PAGE nativ
Explică separarea prin sarcină, dimensiune și formă în condiții nedenaturante. Studenții înțeleg când PAGE nativ este preferat SDS-PAGE pentru studii funcționale.
Lecția 3 • Fundamentele focalizării izoelectrice
Explică formarea gradientului de pH, focalizarea proteinelor la pI și sistemele cu amfoliți purtători vs. benzi IPG. IEF rezolvă proteine care diferă cu doar 0,01 unități de pH.
Lecția 4 • Electroforeză bidimensională pe gel
Combină IEF și SDS-PAGE pentru a rezolva mii de proteine în funcție de pI și greutatea moleculară. Studenții execută fluxuri de lucru 2-DE și interpretează modele complexe de pete.
Lecția 5 • PAGE nativ albastru și PAGE nativ clar
Acoperă schimbarea de sarcină indusă de Coomassie G-250 în PAGE nativ albastru și utilizarea sa pentru complexe proteice membranare. Studenții disting aplicațiile și limitările BN-PAGE și CN-PAGE.
Capitolul 7AscundeAscunde detaliiVezi detaliiTehnici de electroforeză capilară
Tehnici de electroforeză capilară
Lecția 1 • Electroforeză capilară pe gel pentru acizi nucleici
Aplică capilare umplute cu polimer pentru dimensionarea fragmentelor de ADN și evaluarea calității ARN-ului. CGE înlocuiește gelurile în placă cu analiză automatizată, cantitativă și de randament ridicat.
Lecția 2 • Electroforeză capilară de zonă
Acoperă principiile de separare CZE, selectarea tamponului și modurile de injecție pentru molecule mici și proteine. Studenții dezvoltă și validează metode CZE pentru clase definite de analiți.
Lecția 3 • Instrumentația pentru electroforeză capilară
Descrie dimensiunile capilarelor, sursele de înaltă tensiune, detectoarele și componentele autosamplerului. Familiarizarea cu instrumentul este o condiție prealabilă pentru dezvoltarea metodei în secțiunile ulterioare.
Lecția 4 • Focalizare izoelectrică capilară
Adaptează principiile IEF la formatul capilar pentru determinarea pI-ului proteinelor și profilarea izoformelor. Studenții compară cIEF cu IEF pe gel în ceea ce privește rezoluția și randamentul.
Lecția 5 • Fluxul electroosmotic și controlul său
Explică originea EOF din grupările silanol, direcția sa și strategiile de suprimare sau inversare. Controlul EOF este central pentru optimizarea metodei în toate modurile CE.
Capitolul 8AscundeAscunde detaliiVezi detaliiAplicații avansate și optimizarea metodei
Aplicații avansate și optimizarea metodei
Lecția 1 • Dezvoltarea și validarea metodei
Aplică principiile planificării experimentelor pentru a optimiza procentul de gel, tamponul și condițiile de desfășurare. Parametrii de validare includ specificitatea, liniaritatea, intervalul și reproductibilitatea.
Lecția 2 • Densitometrie cantitativă și analiză de imagine
Acoperă setările de achiziție a imaginii, scăderea fondului și analiza profilului benzilor pentru o cuantificare precisă. Studenții utilizează instrumente software pentru a extrage date numerice fiabile din imaginile gelurilor.
Lecția 3 • Electroforeză pe gel cu câmp pulsat
Explică principiile câmpului electric alternativ care permit separarea ADN-ului de megabaze. Studenții aplică PFGE pentru tipizarea microbiană și analiza genomurilor mari.
Lecția 4 • Integrarea cu metode analitice ulterioare
Conectează rezultatele electroforezei la spectrometria de masă, secvențierea și testele funcționale. Studenții proiectează fluxuri de lucru în mai multe etape în care electroforeza servește ca etapă preparativă sau analitică.
Lecția 5 • Testul de mobilitate electroforetică
Acoperă proiectarea EMSA pentru detectarea interacțiunilor proteină-acid nucleic și cuantificarea afinității de legare. Studenții interpretează modelele de deplasare și supradeplasare pentru a caracteriza complexele.
Certificatul tău valid de finalizare
Acest curs este pentru tine:
Student la masterat/doctorat: are nevoie de cunoștințe sistematice despre tehnici pentru a susține cu încredere cercetarea tezei.
Tehnician de laborator clinic: dorește să înțeleagă știința din spatele fluxurilor de lucru de electroforeză diagnostică.
Tehnician în biologie moleculară: caută să depaneze problemele legate de geluri și să îmbunătățească reproducibilitatea în mod independent.
Persoană care se recalifică în științele vieții: își construiește abilități fundamentale de laborator pentru o nouă cale profesională.
Cercetător în proteomică: pregătit să treacă de la geluri de rutină la metode avansate de separare și detectare.
Analist de control al calității în industria farmaceutică: necesită metode de electroforeză validate pentru caracterizarea biofarmaceutică.
Ce spun cursanții noștri
Lecțiile dumneavoastră sunt perfecte. Am achiziționat pachetul de un an și, în sfârșit, am oportunitatea să urmăresc diverse subiecte de interes fără să fie nevoie să schimb platforma... vă mulțumesc pentru tot ceea ce faceți, v-am recomandat deja altor persoane...

Îmi place cum lecțiile sunt directe la subiect și cum pot să schimb capitolele și să sar peste conținutul de care nu am nevoie.

Îmi place conținutul și modul de prezentare și transcriere a videoclipurilor, ceea ce accelerează procesul!

Platforma este rapidă, simplă de utilizat. Diversitatea conținutului și videoclipurile complementare ajută foarte mult la învățare.

Cele mai importante formări
Întrebări frecvente
Cine este Dedika?
Este certificatul valabil în România?
Cursurile sunt gratuite?
Care este volumul de muncă al cursului?
Cum sunt cursurile?
Cum funcționează cursurile?
Care este durata cursurilor?
Care este costul sau prețul cursurilor?
Ce este un curs EAD sau online și cum funcționează?
Curs PDF




















