Curso de Laboratorio Veterinario

Lección 1 • Equipo e Instrumentación de Laboratorio

Presenta los instrumentos básicos utilizados a lo largo del curso. Los estudiantes adquieren confianza para operar, calibrar y mantener las herramientas esenciales del laboratorio.

Lección 2 • Manejo de Muestras y Cadena de Custodia

Enseña la recepción, el etiquetado y el seguimiento adecuados de las muestras animales. Una cadena de custodia precisa garantiza la integridad de los resultados y el cumplimiento normativo.

Lección 3 • Seguridad en el Laboratorio y Control de Riesgos

Cubre los riesgos biológicos, químicos y físicos específicos de los laboratorios veterinarios. Proporciona la base de seguridad necesaria para todo el trabajo práctico posterior.

Lección 1 • Morfología de Eritrocitos y Leucocitos

Entrena el reconocimiento de la morfología normal y anormal de los glóbulos rojos y blancos en diferentes especies. Los hallazgos morfológicos guían la interpretación clínica.

Lección 2 • Técnicas de Recolección de Sangre por Especie

Cubre los sitios de venopunción y los métodos de sujeción para especies domésticas comunes y exóticas. Una recolección adecuada previene la hemólisis y asegura la calidad de la muestra.

Lección 3 • Fundamentos de las Pruebas de Coagulación

Introduce el tiempo de protrombina, el tiempo de tromboplastina parcial activada y las pruebas de fibrinógeno. Los resultados se interpretan en el contexto de trastornos hemorrágicos.

Lección 4 • Preparación y Tinción Manual del Frotis Sanguíneo

Enseña la técnica del frotis en cuña, la fijación y los métodos de tinción de Romanowsky. Los frotis de calidad son esenciales para realizar conteos diferenciales celulares precisos.

Lección 1 • Pruebas de Endocrinología y Especialidad

Introduce las pruebas de hormona tiroidea, cortisol e insulina utilizando plataformas de inmunoensayo. Los estudiantes comprenden la sensibilidad, especificidad y reactividad cruzada de las pruebas.

Lección 2 • Operación del Analizador Automatizado de Química

Enseña la configuración del instrumento, carga de reactivos, calibración y corridas de control de calidad. Los estudiantes solucionan errores comunes del analizador y marcan los resultados no válidos.

Lección 3 • Pruebas de Electrolitos, Glucosa y Proteínas

Cubre los métodos de electrodo selectivo de iones, las pruebas colorimétricas de glucosa y la cuantificación de proteínas. Estos analitos son críticos para la evaluación metabólica y nutricional.

Lección 4 • Paneles de Función Hepática y Renal

Se enfoca en pruebas que miden enzimas hepáticas, bilirrubina, BUN y creatinina. Los estudiantes correlacionan los patrones de analitos con la disfunción orgánica en todas las especies.

Lección 1 • Examen Físico y Químico de Orina

Enseña la interpretación de color, turbidez, densidad específica y tiras reactivas. Los resultados del tamizaje químico guían las prioridades del examen del sedimento.

Lección 2 • Índice Proteína/Creatinina en Orina

Cubre la medición cuantitativa de proteínas y el cálculo del índice UPC para la estadificación de la proteinuria renal. Los resultados se interpretan junto con los datos del sedimento y la presión arterial.

Lección 3 • Recolección y Conservación de Orina

Cubre los métodos de cistocentesis, cateterismo y micción espontánea por especie. El método de recolección afecta directamente la validez de los resultados del sedimento y del cultivo.

Lección 1 • Pruebas de Susceptibilidad Antimicrobiana

Enseña los métodos de difusión en disco y microdilución en caldo para determinar la MIC y las categorías de susceptibilidad. Los resultados guían la selección racional de antimicrobianos en casos clínicos.

Lección 2 • Técnica Aséptica y Preparación de Medios

Establece prácticas de trabajo estériles y enseña la preparación de medios de cultivo comunes. La técnica aséptica previene la contaminación que invalida los resultados del cultivo.

Lección 3 • Tinción de Gram e Identificación Preliminar

Enseña el procedimiento y la interpretación de la tinción de Gram para la clasificación preliminar rápida del organismo. Los resultados de la tinción de Gram dirigen la selección de medios y las decisiones de tratamiento.

Lección 4 • Métodos de Identificación Bioquímica y Rápida

Cubre el uso de pruebas de catalasa, oxidasa, coagulasa y paneles de identificación comerciales. Los estudiantes confirman la identidad del organismo antes de las pruebas de susceptibilidad.

Lección 5 • Inoculación e Incubación de Muestras

Cubre la técnica de estría en placa, la selección de medios selectivos y las condiciones de incubación. La elección correcta del medio y la atmósfera maximiza la recuperación de patógenos.

Lección 1 • Conteo de Huevos Fecales y Cultivo de Larvas

Enseña el conteo cuantitativo de huevos de McMaster y el cultivo de desarrollo larvario para la especiación. Los conteos de huevos guían el tratamiento antihelmíntico y el monitoreo de la resistencia.

Lección 2 • Técnicas de Examen Fecal

Cubre los métodos de frotis directo, flotación y sedimentación para la detección de parásitos gastrointestinales. La selección del método depende de la densidad y morfología del parásito.

Lección 3 • Detección de Hemoparásitos

Cubre el examen de frotis sanguíneo grueso y fino y las técnicas de concentración para hemoparásitos. Los estudiantes identifican Babesia, Anaplasma y microfilarias morfológicamente.

Lección 4 • Detección e Identificación de Protozoarios

Cubre la detección de Giardia, Cryptosporidium, Tritrichomonas y coccidias mediante microscopía y pruebas de antígenos. La identificación de protozoarios requiere métodos específicos de tinción y concentración.

Lección 1 • Procesamiento y Corte Histológico

Enseña el procesamiento de tejidos, la inclusión en parafina, el corte con micrótomo y la tinción con H&E. Los estudiantes producen cortes de grosor consistente adecuados para la revisión del patólogo.

Lección 2 • Fijación y Envío de Tejidos para Histopatología

Cubre las proporciones de fijación con formalina, el recorte de tejidos y el empaque adecuado para el envío. Una fijación correcta es obligatoria para un diagnóstico histopatológico válido.

Lección 3 • Interpretación Citológica Sistemática

Introduce un enfoque estructurado para evaluar la celularidad, el fondo y las poblaciones celulares. Los estudiantes clasifican las muestras como inflamatorias, hiperplásicas o neoplásicas.

Lección 4 • Métodos de Recolección de Muestras para Citología

Cubre las técnicas de aspiración con aguja fina, impronta y frotis para varios tipos de tejido. El método de recolección determina el rendimiento celular y la adecuación diagnóstica.

Lección 1 • Control de Calidad de PCR y Prevención de la Contaminación

Establece los controles, la segregación del área de trabajo y las prácticas de descontaminación esenciales para obtener resultados de PCR confiables. La contaminación es la principal causa de hallazgos falsos positivos por PCR.

Lección 2 • Principios de la Extracción de Ácidos Nucleicos

Cubre la extracción de ADN y ARN de sangre, tejido, hisopos y heces mediante métodos de columna y perlas magnéticas. La calidad de la extracción determina directamente la sensibilidad de la PCR.

Lección 3 • PCR Convencional y en Tiempo Real

Enseña la preparación de la mezcla maestra de PCR, la programación del termociclador y la electroforesis en gel para la PCR convencional. La PCR en tiempo real añade cuantificación y un riesgo reducido de contaminación.

Lección 4 • Secuenciación y Métodos Moleculares Avanzados

Presenta la secuenciación Sanger, conceptos de secuenciación de nueva generación y MALDI-TOF para la identificación molecular. Los estudiantes comprenden cuándo los métodos avanzados añaden valor diagnóstico.