
Curso de Diagnóstico Molecular Clínico
Domine o espectro completo do diagnóstico molecular, desde a extração de ácidos nucleicos e amplificação por PCR até o sequenciamento de nova geração e a interpretação de resultados clínicos. Este curso capacita profissionais de laboratório clínico com o conhecimento técnico e as habilidades práticas necessárias para executar, validar e gerenciar ensaios moleculares com confiança. Mantenha-se atualizado com as tecnologias diagnósticas mais críticas da atualidade em doenças infecciosas, oncologia e farmacogenômica.
O que você vai aprender:
Você desenvolverá uma compreensão aprofundada dos princípios de biologia molecular e os aplicará diretamente aos fluxos de trabalho do laboratório clínico. O curso abrange coleta de espécimes, extração de ácidos nucleicos e todas as principais plataformas de amplificação utilizadas no diagnóstico moderno. Você aprenderá a projetar e interpretar ensaios de PCR, qPCR e NGS para aplicações em doenças infecciosas, oncologia e farmacogenômica. Gestão da qualidade, validação de ensaios e conformidade regulatória são abordadas em detalhes para que você possa operar dentro de padrões laboratoriais acreditados. Você também explorará tecnologias emergentes, incluindo PCR digital, plataformas moleculares de ponto de atendimento e ferramentas de bioinformática para análise de dados genômicos.
Como você estuda de forma prática Curso de Diagnóstico Molecular Clínico
Como você pratica Curso de Diagnóstico Molecular Clínico
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Conteúdo do curso
8 Capítulos • 40 AulasDuração entre 4 e 360 horas (você decide)
Capítulo 1EsconderEsconder detalhesVer detalhesFundamentos do Diagnóstico Molecular
Fundamentos do Diagnóstico Molecular
Aula 1 • Estrutura e Função dos Ácidos Nucleicos
A estrutura do DNA e RNA, o pareamento de bases e a replicação são examinados. Essa base sustenta a compreensão de todos os métodos de amplificação e detecção subsequentes.
Aula 2 • Biologia Celular para Diagnóstico
Os compartimentos celulares e a localização dos ácidos nucleicos são revisados. Os alunos conectam a função das organelas à coleta de espécimes e ao rendimento de ácidos nucleicos.
Aula 3 • Fundamentos de Genética e Genômica
Herança mendeliana, mutações e variação genômica são introduzidos. Esses conceitos sustentam a interpretação de resultados de testes genéticos e de doenças infecciosas.
Aula 4 • Enzimas em Biologia Molecular
As principais enzimas usadas em ensaios moleculares são descritas com seus mecanismos. Os alunos reconhecem como as propriedades das enzimas determinam as escolhas de desenho do ensaio.
Aula 5 • Introdução ao Teste Molecular Clínico
O escopo e a utilidade clínica do diagnóstico molecular são delineados. Os alunos distinguem o teste molecular dos métodos convencionais e identificam as principais áreas de aplicação.
Capítulo 2EsconderEsconder detalhesVer detalhesColeta de Espécimes e Extração de Ácidos Nucleicos
Coleta de Espécimes e Extração de Ácidos Nucleicos
Aula 1 • Plataformas de Extração Automatizada
Sistemas automatizados de manipulação de líquidos para extração de ácidos nucleicos são comparados. Os alunos operam plataformas e reconhecem os benefícios da integração do fluxo de trabalho em laboratórios de alto volume.
Aula 2 • Quantificação de Ácidos Nucleicos e Avaliação de Qualidade
Métodos espectrofotométricos, fluorométricos e eletroforéticos para avaliar a pureza e o rendimento de ácidos nucleicos são abordados. As métricas de qualidade orientam as decisões sobre prosseguir com ensaios posteriores.
Aula 3 • Tipos de Espécimes e Padrões de Coleta
Os tipos de espécimes apropriados para ensaios moleculares são identificados juntamente com os requisitos de coleta. A coleta adequada previne diretamente erros pré-analíticos que comprometem os resultados.
Aula 4 • Princípios da Extração de Ácidos Nucleicos
Os princípios químicos e físicos da lise celular e purificação de ácidos nucleicos são explicados. Os alunos selecionam métodos de extração com base no tipo de espécime e nas necessidades do ensaio posterior.
Aula 5 • Transporte e Armazenamento de Espécimes
Os requisitos de temperatura, tempo e recipiente para a estabilidade dos ácidos nucleicos são detalhados. Os alunos aplicam protocolos de armazenamento para manter a integridade do espécime antes da extração.
Capítulo 3EsconderEsconder detalhesVer detalhesTécnicas de Amplificação de Ácidos Nucleicos
Técnicas de Amplificação de Ácidos Nucleicos
Aula 1 • Fundamentos da Reação em Cadeia da Polimerase
As etapas de termociclagem da PCR, o desenho de primers e os componentes da reação são examinados em detalhes. O domínio da mecânica da PCR é pré-requisito para todos os métodos de amplificação avançados.
Aula 2 • PCR com Transcriptase Reversa
A conversão de RNA em cDNA e a amplificação subsequente são detalhadas para a detecção de alvos de RNA. Os alunos aplicam a RT-PCR ao diagnóstico de vírus respiratórios e expressão gênica.
Aula 3 • PCR Multiplex e Desenho de Painéis
A amplificação simultânea de múltiplos alvos em uma única reação é abordada. Os alunos equilibram a compatibilidade de primers, a sensibilidade e a utilidade clínica na construção do painel.
Aula 4 • Métodos de Amplificação Isotérmica
LAMP, NASBA e SDA são apresentados como alternativas à amplificação baseada em termociclagem. Os alunos avaliam métodos isotérmicos para ambientes de ponto de atendimento e com recursos limitados.
Aula 5 • PCR Quantitativa em Tempo Real
As químicas de detecção fluorescente e as estratégias de quantificação em qPCR são ensinadas. Os alunos calculam cargas virais e níveis de expressão gênica a partir de curvas de amplificação.
Capítulo 4EsconderEsconder detalhesVer detalhesMétodos de Detecção e Genotipagem
Métodos de Detecção e Genotipagem
Aula 1 • Genotipagem Baseada em Microarranjos
Plataformas de microarranjos de DNA para genotipagem simultânea de milhares de variantes são introduzidas. Os alunos avaliam dados de arranjos para tipagem de patógenos e painéis farmacogenômicos.
Aula 2 • Detecção Baseada em Hibridização
Os princípios e formatos de hibridização de sondas, incluindo Southern blot e ensaios de sonda em linha, são abordados. Os alunos aplicam métodos de hibridização à identificação de patógenos e detecção de resistência.
Aula 3 • Sequenciamento Sanger para Uso Clínico
O sequenciamento por terminação de cadeia com didesoxi e a eletroforese capilar são explicados para identificação de variantes. Os alunos interpretam eletroferogramas e identificam mutações clinicamente significativas.
Aula 4 • Análise de Curva de Fusão e Alta Resolução
A análise de curva de fusão pós-PCR para genotipagem e varredura de mutações é detalhada. Os alunos distinguem alelos selvagens de mutantes usando perfis de temperatura de fusão.
Aula 5 • Métodos de Análise de Fragmentos e Dimensionamento
A análise de fragmentos por eletroforese capilar para tipagem de STR e instabilidade de microssatélites é ensinada. Os alunos aplicam o dimensionamento de fragmentos ao teste de identidade e ao diagnóstico oncológico.
Capítulo 5EsconderEsconder detalhesVer detalhesSequenciamento de Próxima Geração em Laboratórios Clínicos
Sequenciamento de Próxima Geração em Laboratórios Clínicos
Aula 1 • Estratégias de Enriquecimento Direcionado
Métodos de enriquecimento baseados em amplicon e captura por hibridização para sequenciamento focado são comparados. Os alunos desenham painéis direcionados a genes clinicamente acionáveis ou genomas de patógenos.
Aula 2 • Plataformas de Sequenciamento e Químicas
Illumina, Ion Torrent e plataformas de leitura longa são comparadas por química, tamanho de leitura e perfil de erro. Os alunos selecionam plataformas com base nos requisitos da aplicação clínica.
Aula 3 • Preparação de Biblioteca NGS
Fragmentação de DNA, reparo de extremidades, ligação de adaptadores e etapas de amplificação para construção de bibliotecas NGS são detalhados. A qualidade da biblioteca determina diretamente a profundidade do sequenciamento e a confiabilidade dos dados.
Aula 4 • Interpretação de Resultados Clínicos de NGS
Os arcabouços de classificação de variantes e os padrões de laudo para NGS clínico são aplicados. Os alunos distinguem variantes patogênicas de benignas usando critérios de classificação baseados em evidências.
Aula 5 • Noções Básicas de Pipeline Bioinformático
As etapas de alinhamento de leituras, chamada de variantes e anotação em um pipeline de NGS clínico são delineadas. Os alunos interpretam resultados do pipeline e reconhecem fontes de erro bioinformático.
Capítulo 6EsconderEsconder detalhesVer detalhesMicrobiologia Molecular e Doenças Infecciosas
Microbiologia Molecular e Doenças Infecciosas
Aula 1 • Genotipagem de Resistência Antimicrobiana
A detecção molecular de genes e mutações de resistência é ensinada para suporte rápido à decisão clínica. Os alunos identificam marcadores de MRSA, carbapenemase e resistência antiviral.
Aula 2 • Detecção de Patógenos Bacterianos
Métodos de PCR e sequenciamento para detecção direta e identificação de bactérias a partir de espécimes clínicos são abordados. Os alunos aplicam métodos moleculares onde a cultura é lenta ou impraticável.
Aula 3 • Ensaios de Carga Viral e Genotipagem
O teste quantitativo de carga viral e a genotipagem para HIV, HCV, HBV e CMV são detalhados. Os alunos usam dados de carga viral para orientar a terapia antiviral e monitorar a resposta ao tratamento.
Aula 4 • Painéis de Patógenos Respiratórios
Painéis multiplex sindrômicos para vírus respiratórios e bactérias atípicas são examinados. Os alunos interpretam os resultados do painel no contexto da apresentação clínica e da epidemiologia.
Aula 5 • Teste de Patógenos Emergentes e Surtos
Estratégias de resposta molecular rápida para patógenos novos e em surto são abordadas. Os alunos aplicam princípios de desenvolvimento de LDT e sequenciamento de vigilância a ameaças emergentes.
Capítulo 7EsconderEsconder detalhesVer detalhesDiagnóstico Molecular em Oncologia
Diagnóstico Molecular em Oncologia
Aula 1 • Instabilidade de Microssatélites e Teste de MMR
O teste de MSI baseado em PCR e a correlação com IHC para deficiência de reparo de pareamento incorreto são detalhados. Os alunos aplicam o status de MSI à elegibilidade para imunoterapia e triagem de síndrome de Lynch.
Aula 2 • Detecção de Fusões Gênicas e Translocação
Métodos de FISH, RT-PCR e NGS para detecção de translocações cromossômicas e fusões gênicas são ensinados. Os alunos identificam fusões clinicamente acionáveis em tumores hematológicos e sólidos.
Aula 3 • Análise de Mutações Somáticas
A detecção de mutações somáticas em oncogenes e supressores tumorais usando PCR e NGS é abordada. Os alunos vinculam mutações específicas à elegibilidade para terapia alvo e prognóstico.
Aula 4 • Teste Molecular em Neoplasias Hematológicas
Marcadores moleculares para diagnóstico e monitoramento de leucemia, linfoma e mieloma são abordados. Os alunos aplicam ensaios de clonalidade e teste de MRD ao manejo de doenças hematológicas.
Aula 5 • Biópsia Líquida e DNA Tumoral Circulante
O isolamento de DNA livre de células e os métodos de detecção de ctDNA para perfil tumoral não invasivo são examinados. Os alunos avaliam as aplicações da biópsia líquida para monitoramento e detecção precoce.
Capítulo 8EsconderEsconder detalhesVer detalhesGestão da Qualidade e Conformidade Laboratorial
Gestão da Qualidade e Conformidade Laboratorial
Aula 1 • Prevenção e Controle de Contaminação
As fontes de contaminação por amplicon e espécime em laboratórios moleculares são identificadas com estratégias de prevenção. Os alunos desenham controles físicos e processuais para eliminar resultados falso-positivos.
Aula 2 • Ensaio de Proficiência e QA Externo
Os programas externos de ensaio de proficiência e seu papel na acreditação laboratorial são explicados. Os alunos se inscrevem em programas de EP, analisam resultados e implementam ações corretivas.
Aula 3 • Desenho e Monitoramento do Controle de Qualidade
Materiais de CQ interno, gráficos de Levey-Jennings e regras de Westgard são aplicados ao monitoramento de ensaios moleculares. Os alunos detectam e respondem a falhas de CQ antes da liberação dos resultados dos pacientes.
Aula 4 • Conformidade Regulatória e Acreditação
Os padrões de acreditação laboratorial, qualificações de pessoal e requisitos de documentação para laboratórios moleculares são revisados. Os alunos se preparam para prontidão para inspeção e mantêm registros de conformidade.
Aula 5 • Princípios de Validação de Ensaio
Parâmetros de validação analítica incluindo exatidão, precisão, sensibilidade e especificidade são definidos e medidos. Os alunos desenham estudos de validação atendendo aos requisitos dos organismos de acreditação.
Seu certificado válido de conclusão
Este curso é para si:
Cientistas de laboratório médico em busca de maior especialização em métodos de teste molecular.
Técnicos de laboratório clínico prontos para fazer a transição para funções moleculares especializadas.
Residentes de patologia que desejam uma base estruturada em fluxos de trabalho de diagnóstico genômico.
Graduados em microbiologia ingressando em ambientes de laboratório hospitalar ou de referência em breve.
Conselheiros genéticos que buscam compreender melhor o lado laboratorial dos testes genômicos.
Educadores de ciências biomédicas que estão reformulando a grade curricular em torno do diagnóstico moderno.
O que os nossos alunos dizem
As vossas aulas são perfeitas. Adquiri o pacote de um ano e, finalmente, tenho a oportunidade de acompanhar diversos temas do meu interesse sem precisar mudar de plataforma... agradeço por tudo o que fazem, já vos recomendei a outras pessoas...

Gosto de como as lições são directas ao assunto e como consigo alterar capítulos e saltar conteúdos que não preciso.

Gosto do conteúdo e do modo de apresentação e transcrição de vídeos, o que acelera o processo!

A plataforma é rápida, simples de usar. A diversidade de conteúdo e os vídeos complementares ajudam muito na aprendizagem.

Principais capacitações
FAQ
Quem é a Dedika?
O certificado é válido em Brasil?
Os cursos são gratuitos?
Qual é a carga horária do curso?
Como são os cursos?
Como funcionam os cursos?
Qual é a duração dos cursos?
Qual é o custo ou preço dos cursos?
O que é um curso EAD ou online e como funciona?
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