Curso de Microbiologia e Laboratório

Aula 1 • Classificação e Taxonomia dos Microrganismos

Introduz a nomenclatura binomial, as árvores filogenéticas e o sistema dos três domínios. Os formandos conseguem classificar corretamente os organismos e interpretar relações taxonómicas.

Aula 2 • Estrutura e Função da Célula Microbiana

Compara a arquitetura celular procariótica e eucariótica e o papel dos organelos. Desenvolve a literacia estrutural necessária para compreender a fisiologia microbiana ao longo do curso.

Aula 3 • História e Âmbito da Microbiologia

Traça o percurso da microbiologia desde as primeiras observações até às aplicações modernas. Fornece contexto para compreender por que razão o estudo dos microrganismos é central para a medicina, a indústria e o ambiente.

Aula 1 • Fatores Ambientais que Afetam o Crescimento

Examina como a temperatura, o pH, o oxigénio, a osmolaridade e a pressão influenciam o crescimento microbiano. Prepara os formandos para conceber condições de incubação adequadas no laboratório.

Aula 2 • Requisitos Nutricionais dos Microrganismos

Identifica macronutrientes, micronutrientes e necessidades de fatores de crescimento em diferentes tipos microbianos. Informa diretamente a formulação de meios abordada em capítulos laboratoriais posteriores.

Aula 3 • Vias do Metabolismo Energético

Aborda a glicólise, a fermentação, a respiração aeróbia e a respiração anaeróbia. Os formandos relacionam as vias metabólicas com resultados laboratoriais observáveis, como a produção de gás e ácido.

Aula 1 • Princípios da Técnica Assética

Ensina a esterilização à chama, a transferência estéril e os hábitos de trabalho sem contaminação. Estas competências sustentam todos os procedimentos de cultura e inoculação do curso.

Aula 2 • Níveis de Biossegurança e Avaliação de Risco

Define os níveis de biossegurança 1–4, os perigos associados e as medidas de contenção necessárias. Os formandos avaliam o risco do organismo antes de selecionar as medidas de proteção adequadas.

Aula 3 • Equipamento de Proteção Individual e Higiene

Aborda a colocação, remoção e eliminação corretas do EPI num laboratório de microbiologia. Reforça a higiene das mãos e a descontaminação como barreiras primárias de controlo de infeção.

Aula 1 • Coloração Simples e Diferencial

Ensina as colorações simples e os procedimentos de coloração diferencial de Gram, Ziehl-Neelsen e de endósporos. Os formandos interpretam os resultados da coloração para inferir a composição da parede celular e a relevância clínica.

Aula 2 • Princípios da Microscopia Ótica

Explica a ótica, ampliação, resolução e abertura numérica dos microscópios compostos. Os formandos focam corretamente as amostras e selecionam as objetivas adequadas para cada aplicação.

Aula 3 • Preparação de Amostras Microscópicas

Aborda os métodos de preparação de preparações a fresco, gota pendente e esfregaço fixado pelo calor. A preparação adequada da amostra evita distorções e garante uma observação morfológica precisa.

Aula 1 • Tipos e Composição dos Meios de Cultura

Classifica os meios quanto ao estado físico, composição química e finalidade funcional. Os formandos selecionam o tipo de meio correto para cada organismo e objetivo experimental.

Aula 2 • Isolamento de Culturas Puras

Ensina os métodos de estria em placa, incorporação em placa e espalhamento em placa para obtenção de culturas puras. Os formandos avaliam a morfologia das colónias para confirmar o sucesso do isolamento.

Aula 3 • Preparação e Esterilização de Meios

Aborda a pesagem, dissolução, ajuste de pH e esterilização em autoclave dos meios. Os formandos preparam meios estéreis e corretamente tamponados, prontos para inoculação.

Aula 4 • Isolamento Seletivo de Organismos Específicos

Aplica meios seletivos e diferenciais para isolar organismos clinicamente e ambientalmente significativos. Os formandos concebem estratégias de isolamento para organismos-alvo a partir de amostras complexas.

Aula 1 • Sistemas Comerciais de Identificação

Introduz painéis bioquímicos miniaturizados e plataformas de identificação automatizadas. Os formandos operam estes sistemas e interpretam códigos de perfil numérico para a identificação de organismos.

Aula 2 • Testes Clássicos de Identificação Bioquímica

Aborda os testes de fermentação de hidratos de carbono, oxidase, catalase, urease e IMViC. Os formandos realizam e interpretam resultados para restringir a identificação de isolados desconhecidos.

Aula 3 • Técnicas Moleculares de Identificação

Aplica PCR, sequenciação do gene 16S rRNA e MALDI-TOF MS para identificação definitiva. Os formandos extraem ADN, realizam PCR e interpretam dados de sequência ou espetros.

Aula 4 • Métodos Imunológicos de Identificação

Aborda a aglutinação, ELISA e imunofluorescência para identificação baseada em antigénios. Os formandos selecionam e realizam testes serológicos adequados para organismos alvo.

Aula 1 • Mutação e Reparação do ADN

Aborda as mutações espontâneas e induzidas, os tipos de mutagénicos e os mecanismos de reparação. Os formandos relacionam as taxas de mutação com a variação fenotípica e o surgimento de resistência a antibióticos.

Aula 2 • Noções Básicas de Genómica e Bioinformática

Introduz a sequenciação do genoma completo, anotação e ferramentas de genómica comparativa. Os formandos navegam em bases de dados públicas e interpretam resultados genómicos básicos para identificação microbiana.

Aula 3 • Mecanismos de Transferência Horizontal de Genes

Explica a transformação, transdução e conjugação como vias de troca genética. Os formandos preveem como os genes de resistência se propagam através das populações microbianas.

Aula 1 • Mecanismos de Resistência Antimicrobiana

Explica a inativação enzimática, bombas de efluxo, modificação do alvo e redução da permeabilidade. Os formandos relacionam os mecanismos de resistência com combinações específicas de fármaco-organismo.

Aula 2 • Classes de Agentes Antimicrobianos

Categoriza antibióticos, antifúngicos, antivíricos e antiparasitários pelo mecanismo de ação. Os formandos associam a classe do fármaco ao local alvo e preveem o espetro de atividade.

Aula 3 • Deteção Molecular de Genes de Resistência

Aplica PCR e sequenciação para detetar genes de resistência como mecA, vanA e blaKPC. Os formandos interpretam os resultados moleculares em conjunto com os dados fenotípicos de sensibilidade.

Aula 4 • Diluição em Caldo e Determinação da CIM

Ensina os métodos de macrodiluição e microdiluição para determinar a concentração inibitória mínima. Os formandos calculam a CIM, a CBM e interpretam o significado clínico dos resultados.