Formação em Histologia

Aula 1 • Visão Geral dos Quatro Tipos de Tecidos

Apresenta os tecidos epitelial, conjuntivo, muscular e nervoso e as suas características definidoras. Fornece o quadro de classificação utilizado ao longo do curso.

Aula 2 • Terminologia e Nomenclatura Histológica

Estabelece um vocabulário preciso para descrever a morfologia celular e dos tecidos. A terminologia exata é essencial para o reporte laboratorial e a comunicação profissional.

Aula 3 • A Célula como Unidade Básica

Abrange a estrutura dos organelos, a dinâmica das membranas e os fundamentos do ciclo celular. Estabelece o quadro celular necessário para interpretar a arquitetura dos tecidos.

Aula 1 • Microscopia de Campo Claro e de Contraste de Fase

Ensina a operação de microscópios de campo claro e de contraste de fase para o exame de rotina de tecidos. Estas modalidades são as ferramentas principais utilizadas nos fluxos de trabalho padrão em histologia.

Aula 2 • Documentação Laboratorial e Registos de Qualidade

Estabelece protocolos para registo de amostras, reagentes e manutenção de equipamentos. Registos exatos apoiam a rastreabilidade e a conformidade regulamentar.

Aula 3 • Operação do Micrótomo e do Crióstato

Apresenta a mecânica do micrótomo rotativo e do crióstato para a produção de cortes finos de tecido. Uma técnica de corte adequada determina diretamente a qualidade da coloração e do diagnóstico.

Aula 4 • Normas de Segurança no Laboratório de Histologia

Aborda a classificação de perigos químicos, equipamento de proteção individual e procedimentos de emergência. O cumprimento das normas de segurança sustenta todas as atividades laboratoriais subsequentes.

Aula 1 • Princípios de Fixação e Tipos de Fixadores

Explica os mecanismos de fixação química, formulações comuns de fixadores e variáveis do tempo de fixação. A qualidade da fixação determina todos os resultados posteriores da coloração e da recuperação antigénica.

Aula 2 • Receção da Amostra e Exame Macroscópico

Abrange a receção, descrição macroscópica e dissecação inicial de tecido fresco. O manuseamento adequado nesta fase evita artefactos e garante uma amostragem representativa.

Aula 3 • Desidratação e Clarificação de Tecidos

Ensina a desidratação com álcoois graduados e a seleção de agentes de clarificação para a infiltração em parafina. A desidratação incompleta causa artefactos de inclusão que comprometem a qualidade do corte.

Aula 4 • Infiltração e Inclusão em Parafina

Aborda os parâmetros de infiltração com cera e as técnicas de orientação para inclusão. A orientação correta é fundamental para obter planos de tecido com utilidade diagnóstica.

Aula 1 • Princípios da Coloração com Hematoxilina e Eosina

Explica a química dos corantes, os mecanismos de coloração e o papel dos mordentes na H&E. A H&E é a coloração de base universal com a qual todos os outros métodos são comparados.

Aula 2 • Colorações Especiais do Tecido Conjuntivo

Aborda as colorações Masson tricrómico, van Gieson e reticulina para visualização de colagénio e fibras. Estas colorações alargam a capacidade de diagnóstico para além da H&E em patologia fibrótica e vascular.

Aula 3 • Resolução de Problemas e Controlo de Qualidade da Coloração

Identifica defeitos comuns de coloração, as suas causas e ações corretivas. A resolução sistemática de problemas mantém a qualidade das lâminas e reduz o erro de diagnóstico.

Aula 4 • Execução do Protocolo de Coloração H&E

Fornece procedimentos de coloração H&E manuais e automatizados passo a passo, com pontos de verificação de qualidade. A execução consistente produz um contraste nuclear e citoplasmático reprodutível.

Aula 1 • Colorações para Deteção de Microrganismos

Ensina as colorações Gram, Ziehl-Neelsen, prata metenamina de Grocott e PAS para agentes patogénicos. A identificação de agentes patogénicos em cortes de tecido é fundamental para o diagnóstico de doenças infeciosas.

Aula 2 • Técnicas de Histoquímica Enzimática

Aplica as reações de fosfatase alcalina, ATPase e NADH-TR em cortes por congelação. A histoquímica enzimática é indispensável para a tipagem de fibras musculares e a avaliação de doenças metabólicas.

Aula 3 • Colorações Especiais em Neuropatologia

Aborda as colorações Luxol fast blue, prata de Bielschowsky e Nissl para componentes do tecido neural. Estas colorações apoiam o diagnóstico de doenças desmielinizantes, degenerativas e neoplásicas do SNC.

Aula 4 • Princípios das Reações Histoquímicas

Explica os mecanismos de reação química e enzimática subjacentes à coloração histoquímica. A compreensão da química das reações permite a seleção racional de colorações e a resolução de problemas.

Aula 1 • Métodos de Recuperação Antigénica

Aborda estratégias de recuperação antigénica por calor e enzimática para tecidos fixados em formalina. A recuperação restaura a acessibilidade dos epítopos perdida durante a fixação e é essencial para a sensibilidade da IHQ.

Aula 2 • Estrutura do Anticorpo e Ligação Antigénio-Anticorpo

Revisita a estrutura das imunoglobulinas, o reconhecimento de epítopos e conceitos de afinidade relevantes para a IHQ. Esta base explica por que razão a seleção e validação de anticorpos são críticas para a fiabilidade do ensaio.

Aula 3 • Execução do Protocolo de IHQ e Controlos

Fornece um fluxo de trabalho de coloração IHQ de ponta a ponta com controlos positivos e negativos obrigatórios. A utilização rigorosa de controlos é a principal salvaguarda contra resultados falso-positivos e falso-negativos.

Aula 4 • Interpretação e Classificação da IHQ

Ensina a avaliação da localização subcelular, a classificação da intensidade da coloração e a estimativa percentual. A classificação padronizada garante um reporte de IHQ reprodutível e clinicamente acionável.

Aula 1 • Hibridação In Situ Cromogénica

Aborda a aplicação de sondas CISH, amplificação de sinal e deteção cromogénica em cortes de parafina. A CISH fornece dados de número de cópias de genes com microscopia de campo claro padrão.

Aula 2 • Hibridação In Situ por Fluorescência

Ensina a conceção de sondas FISH, hibridação e enumeração de sinais de fluorescência para análise genética. A FISH é o método padrão para detetar amplificações genéticas e rearranjos cromossómicos.

Aula 3 • Integração de Dados Moleculares e Morfológicos

Combina os resultados de ISH, IHQ e morfológicos numa interpretação diagnóstica unificada. As competências de integração são essenciais para a oncologia de precisão e casos de diagnóstico complexos.

Aula 4 • Hibridação In Situ de RNA

Aplica o RNAscope e plataformas semelhantes para a deteção de moléculas individuais de RNA em tecido. A ISH de RNA permite a análise da expressão genética com contexto espacial preservado.

Aula 1 • Conformidade Regulamentar e Acreditação

Aborda as normas de acreditação laboratorial, a avaliação de competências e a preparação para auditorias. A conformidade garante a segurança dos doentes e sustenta o estado operacional do laboratório.

Aula 2 • Reconhecimento de Artefactos Comuns em Tecidos

Identifica artefactos de processamento, corte e coloração e distingue-os de patologia verdadeira. O reconhecimento de artefactos previne o erro de diagnóstico e orienta as etapas corretivas de processamento.

Aula 3 • Princípios da Classificação Histológica de Tumores

Aplica os critérios de classificação da OMS para categorizar tumores epiteliais, mesenquimatosos e hematopoiéticos. A exatidão da classificação impacta diretamente a seleção do tratamento e os resultados para os doentes.

Aula 4 • Abordagem Sistemática à Interpretação de Lâminas

Estabelece uma estratégia de análise estruturada de baixa para alta ampliação para avaliação de tecidos. Uma abordagem sistemática reduz os achados perdidos e apoia conclusões de diagnóstico consistentes.